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神奇的细胞因子系列之肾类器官培养

   2024-09-14 2200
导读

类器官是由干细胞或病人身上提取的肿瘤组织在特定的3D体外微环境下自组织发育而来的、高度模拟体内真实器官特征的小型化体外器官模型。与二维细胞培养和动物模型相比,类器官呈现出更加复杂的空间形态,可以更好地模拟组织器官的功能和生理反应。类器官技术的崛起,预示着新药研发进入了“低风险、低投入、高回报”的新纪元




   类器官是由干细胞或病人身上提取的肿瘤组织在特定的3D体外微环境下自组织发育而来的、高度模拟体内真实器官特征的小型化体外器官模型。与二维细胞培养和动物模型相比,类器官呈现出更加复杂的空间形态,可以更好地模拟组织器官的功能和生理反应。类器官技术的崛起,预示着新药研发进入了“低风险、低投入、高回报”的新纪元。



    肾脏是人体的重要器官,主要负责过滤血液、排泄废物和维持电解质平衡。肾衰竭是一种严重的肾脏疾病,通常早期症状不明显,但在某些诱因下会短期内急剧加重。目前,治疗肾衰竭的两大手段主要是透析和肾移植。透析要求病患每周3次、每次35小时的频率接受治疗,给患者带来严重的生活和经济负担。而肾移植有更好的生存率,能够减少终身透析的医药费用,更好的改善病患生活质量。据统计,中国在202010月有超过60439人次等待肾移植,2020年前11个月共完成肾移植9930例次,成功接受肾移植手术的病患仅占不到五分之一。

    肾脏类器官技术有望实现肾脏组织的再生和修复,为肾脏移植提供新的解决方案。通过将健康的肾脏类器官移植到患者体内,有助于修复受损的肾脏组织。此外,通过体外培养技术,未来可能实现人工合成具有完整功能的肾脏组织。目前,由人诱导多能干细胞(hiPSCs)诱导得到上皮性输尿管芽(Ureteric bud,UB)和肾单位前体细胞(Nephron progenitors, NPs)的实验方案已经被阐明。由hiPSCs诱导产生基质前体细胞(Stromal progenitors, SPs)的实验方案还有待补充。可以用hiPSCs诱导得到UBs及NPs细胞,配合SPs细胞,开展肾类器官研究。


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图1 肾类器官培养流程


hiPSCs的培养分化




丝裂霉素C处理小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)并接种hiPSCs,加入胶原酶 IV消化组织后收集沉淀的iPSCs。用细胞消化液分离沉淀的iPSCs并转移到含iPSCs 分化培养基96孔板中培养。重组人bFGF蛋白(Cat# TL-901)参与hiPSCs的培养。

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表1 hiPSC培养分化相关培养基

01

hiPSCs向输尿管芽(Ureteric bud,UB)诱导


拟胚体(Embryoid bodies, EB)分化

    用下表A培养基替换iPSCs分化培养基并培养24小时,随后用B培养基替换,继续培养36小时。转移至C培养基中培养48小时后,更换D培养基继续培养42小时。重组人Activin A蛋白(Cat# TL-910)参与hiPSCs向拟胚层的分化。

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表2 拟胚体分化相关培养基

中肾管(Wolffian duct, WD)前体细胞成熟

    用胰蛋白酶解离细胞后,用流式细胞术分选出阳性细胞。用培养基E换液并培养54小时,转移至培养基F继续培养48小时,最后用培养基G换液并培养72小时,形成输尿管芽球体。重组人GDNF蛋白(Cat#TL-771)和基质胶(Cat#AS-41-5)参与中肾管前体细胞的成熟。

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表3 中肾管前体细胞成熟相关培养基

诱导输尿管芽(Ureteric bud, UB)分枝形成

    将输尿管芽球体转移至分枝形成培养基中,最终得到诱导输尿管芽分枝。重组人GDNF蛋白(Cat#TL-771)和基质胶(Cat#AS-41-5)参与诱导输尿管芽分枝的形成。

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表4 输尿管芽分枝形成相关培养基


02

hiPSCs向肾单位前体细胞(Nephron progenitors, NP)诱导

NP诱导起始于iPSCs培养分化,到iPSCs向拟胚体(Embryoid bodies, EB)分化步骤同诱导UB形成一致。用下表所示的NP培养基替换D培养基并培养24小时。转移至含有中胚层诱导培养基的96孔板,培养144小时并定期换液。转移至ABC3R 培养基并培养 48h,最后用C1F 培养基换液,诱导形成肾单位前体细胞。重组人Activin A蛋白(Cat# TL-910)参与拟胚体向肾单位前体细胞的诱导分化。

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表5 肾单位前体细胞诱导分化相关培养基

同立海源肾类器官相关重组蛋白推荐


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AMMS®类器官专用基质胶推荐


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产品特点

01

安全性能高:无LDEV(乳酸脱氢酶升高病毒)、细菌及支原体

02

浓度多样:浓度范围在8-20 mg/mL之间

03

低内毒素:内毒素含量<1.5EU/mL

04

性能稳定: 成胶性能稳定

05

采用COP瓶包装:可耐受-196°C低温储存、不易破碎、无蛋白吸附性、不易产生脱片

类器官相关新品重组蛋白推荐


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参考文献

[1]《2023-2024类器官技术与应用发展白皮书》医麦客

[2]《默沙东诊疗手册大众版》肾移植 - 免疫性疾病

[3]《生命接力 “移”路同行——中国器官捐献移植五年调查》

[4] Huang B, Zeng Z, Kim S, et al. Long-term expandable mouse and human-induced nephron progenitor cells enable kidney organoid maturation and modeling of plasticity and disease. Cell Stem Cell. 2024;31(6):921-939.e17. doi:10.1016/j.stem.2024.04.002

[5] Zeng Z, Huang B, Parvez R K, et al. Generation of patterned kidney organoids that recapitulate the adult kidney collecting duct system from expandable ureteric bud progenitors. Nature Communications, 2021, 12(1): 3641.

[6] Nishita M, Qiao S, Miyamoto M, et al. Role of Wnt5a-Ror2 signaling in morphogenesis of the metanephric mesenchyme during ureteric budding. Molecular and cellular biology, 2014, 34(16): 3096-3105.

[7] Taguchi A, Nishinakamura R. Higher-order kidney organogenesis from pluripotent stem cells. Cell stem cell, 2017, 21(6): 730-746. e6.

[8] Taguchi A, Kaku Y, Ohmori T, et al. Redefining the in vivo origin of metanephric nephron progenitors enables generation of complex kidney structures from pluripotent stem cells. Cell stem cell, 2014, 14(1): 53-67.

[9] Oldershaw R A, Baxter M A, Lowe E T, et al. Directed differentiation of human embryonic stem cells toward chondrocytes. Nature biotechnology, 2010, 28(11): 1187-1194.

[10] Geuens T, van Blitterswijk C A, LaPointe V L S. Overcoming kidney organoid challenges for regenerative medicine. NPJ Regenerative medicine, 2020, 5(1): 8.


 
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