1. 一般要求：病人在采血前 24 h 内应避免运动和饮酒，不宜改变饮食习惯和睡眠习惯。静脉血标本采集最好在起床后 1 h 内进行。采血时间以上午 7~9 时较为适宜。门诊病人提倡静坐 15 分钟后再采血。
2. 采血时间：有些血液成份日间生理变化较大，因此应相对固定采血时间，一般以清晨空腹抽血为宜（急症项目除外）。
3. 患者体位：有些血液成份存在立位与卧位之间的差异，为减少这种影响，取血病人的体位应相对固定。一般采用坐位取血，而且取血前应让病人有 10 分钟的时间稳定自己的体位。
4. 剧烈的运动：激动的情绪都会影响到一些血液成份浓度的变化，取血的当晨病人不宜做剧烈的运动，避免情绪激动，取血前应有 10 分钟的休息。
5. 输液的影响：由于边输液边采血影响血液成份的测定！规定输液时应在输液的另一侧手臂取血。
6. 生活方式的影响：烟、酒、咖啡及高脂、高糖饮食，可使血液中某些成份高于正常，需与一般病理情况相区别，取血前几日应注意避免。
7. 生理差别的影响：不同年龄组的个体及妇女的妊娠期、月经期，血液成份有一定的生理差异，应注意与病理情况区别。
8. 葡萄糖耐量测定：试验前三天正常饮食，试验当日清晨空腹抽血 2 mL，并同时留尿。将 100 克葡萄糖溶于 300 mL 温水中嘱病人一次服下，立即记录时间；然后分别在服糖后 60、120、180 分钟，各抽血 2 mL，并每次同时留取尿液，注名管号和杯号，立即送检，分别测定血糖及尿糖。适用于本科做生化、免疫、血常规等项目所需血液标本的采集。3. 物品准备：止血带、一次性垫巾、无菌棉签、复合碘消毒液、一次性采血针、负压真空管（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。5.1 查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备，向受检者解释操作目的，以取得合作。在采血管上贴好与检验申请单相对应的标签。5.2 选择血管，常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉，小儿可采用颈外静脉、大隐静脉。5.5 在静脉穿刺部位上方 4~7 厘米处扎止血带，嘱受检者握紧拳头，使静脉充盈显露。5.6 穿刺：推荐使用真空采血技术。摘掉静脉穿刺针上的保护套，进行静脉穿刺，穿刺成功后，用贴好标签的负压真空管采集静脉血，松开止血带，受检者松拳，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压 2~3 分钟。5.8 采血完毕后，产生的医疗垃圾按规定分类处理。6.1 采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。6.2 抗凝管收集血标本后，立即将试管轻轻颠倒 5～6 次，使血液与抗凝剂充分混匀。6.3 一般生化、免疫检验用干燥非抗凝管收集标本，采样量 3~5 mL。若检验项目较多，应适当增加采样量。6.4 血常规检验用 EDTAK2 抗凝管收集标本，采样量 0.5~1 毫升。6.5 凝血四项、血红蛋白电泳、3P 试验用枸橼酸钠（0.2 mL）抗凝管收集标本，采样量必须准确，为 1.8 mL。血沉用枸橼酸钠 0.4 mL 抗凝，6.6 高铁血红蛋白还原试验（G6PD）以枸橼酸钠 0.2 mL 抗凝，另加入葡萄糖 20 mg，抽静脉血 1.8 mL，混匀。6.8 血液粘度测定需同时抽取血常规、血沉和肝素抗凝血（5 mL）三份样本。6.9 餐后，血糖、血脂可增加而影响测定结果，故一般应空腹抽血。有些食物成分：高蛋白、高脂及饮食可引起血中蛋白、血脂、尿酸增高；香蕉、咖啡等可引起尿中儿茶酚胺代谢产物的测定等。6.10 药物影响：如异烟肼、庆大毒素、氨芐青毒素可使谷丙转氨酶活性增高、咖啡因可使胆红素增加。因此，建议检查前几天就停止使用有干扰的药物，且申请单最好能注明近期用药情况。7. 标本运输及实验前存放：低温条件 2~8 ℃ 或室温运输，1 小时内送检。1 小时内分离出血清，室温放置不超过 4 小时，4 ℃ 保存不超过 8 小时，长时间保存需在冰冻条件下，且只能冻融 1 次。8.1 标本采集送出后需附加检验项目的，其申请应在标本采集当天上午 11 点 30 分以前电话通知实验室。8.2 附加检验项目申请为本检验科目录外项目的需提前一天与检验科联系，以便联系其它实验室进行检测。9. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。适用于门诊检验科做血常规等项目所需血液标本的采集。3. 物品准备：一次性采血针、75% 酒精、无菌棉球、0.5 毫升离心管(EDTAK2 抗凝管)、试管架、编号笔、微型震荡器、口罩。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、化验单编号、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集标本年月日时、申请医生及采样者签名。5.1 查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备，向受检者解释操作目的，以取得合作。5.2 常用选择无名指，先用酒精棉球消毒，然后用一次性采血针穿刺，让血液自然流出，用消毒棉球轻拭去第一滴后，将血液收集在 0.5 毫升离心管 (EDTAK2 抗凝管)，约 0.2~0.3 毫升。5.3 用干棉球压住穿刺部位，嘱采血对象按压 2~3 分钟。6.1 采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。6.2 血常规用 EDTAK2 抗凝管收集血标本后，在微型震荡器混匀，使血液与抗凝剂充分混匀。6.3 除特殊情况外，不要在耳垂采血。婴幼儿可自拇指或足跟两侧采血。烧伤患者可根据情况选用皮肤完整的肢体末端。采血部位应无炎立即送检，如需保存，可置 2~8 ℃ 存放不超过 8 小时。8. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。 3. 物品准备：止血带、一次性垫巾、无菌棉签、复合碘消毒液、注射器（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、用药情况、抽血时的体温、是否用氧及其流量、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。5.1 查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备，向受检者解5.2 采血时用 2~5 mL 干燥注射器，按无菌手续抽取肝素抗凝素（1 mL = 1000 U，生理盐水配制）0.2 mL，来回抽动针栓，使针管全部湿润，将多余的肝素排出。5.6.1 旋紧持针器上的针头，摘掉穿刺针上的保护套，试穿刺针是否通畅。5.6.2 进行动脉穿刺，穿刺成功后，采集动脉血 2 mL，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压 2~3 分钟。5.7 抽出后立即用一橡皮头封闭针头，隔绝空气，将注射器重于手中，反复旋转搓动即达抗凝，立即送检。6.1 采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。6.2 采血中注意隔绝空气，空气中的氧分压高于动脉血，二氧化碳分压低于动脉血，从而使血液中 pO2 及 pCO2 都改变而无测定价值。6.3 立即送检，血液不得放置过久，否则血细胞继续新陈代谢，影响数据准确。6.4 若静脉采血，可将手及前臂浸人 45℃ 温水中 20 分钟，使局部静脉血动脉化，穿刺时勿用压脉带，只能缓缓吸引。6.5 也可将手指或耳垂（婴儿取足跟、大趾或头皮）毛细血管热敷或按摩，充分动脉化，以容量 100~140 µL 肝素化毛细玻管采血。针刺深度以血液自然流出为宜，收集时切忌气泡引入毛细玻管。7.2 如不能及时送检，应放入冰水中保存（勿用冰快，以防细胞破坏溶血）。8. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。适用于本科做尿液常规、生化项目所需尿液标本的采集。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、化验单编号、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集标本年月日时、申请医生及采样者签名。5.1 查对检验申请单、姓名，向受检者解释操作目的，以取得合作。5.2 发一次性尿杯一个给受检者，嘱受检者留取新鲜尿立即送检，以清晨第一次中间段尿为宜。5.3 受检者按要求自己用一次性尿杯留取半杯尿标本交检验科编号待检。6.1 根据采集时间，可分为晨尿、随机尿、空腹尿、餐后尿、计时尿（2、3、12、24 h）等。一般定性分析测定，可在任意时间留取标本。常规定性分析，多采用晨尿。计时尿多用于肾功能和有形成分排出率的估计。许多定量分析需收集 24 小时尿液。微生物检验的标本应取尿道排出的中段尿并立即送检。一般尿液检查应留取新鲜尿液置清净、干燥容器中立即送检。（静脉滴注大剂量青霉素、VitC 时可影响尿蛋白、尿糖及尿隐血结果，应尽量避免）。6.2 特殊检验如尿妊娠试验、尿糖定性试验一般应取空腹晨尿送检。6.3 标本应避免污染。一般定性分析标本，应在留取后马上检测。若需保存、或收集 24 h 尿液，原则上应首选 0～4 ℃ 冷藏，必要时可添加化学防腐剂。常用的化学防腐剂有：a. 甲苯（或二甲苯）：较常用，如 24 h 尿糖定量、尿蛋白定量测定。100 mL 尿液中加 1 mL。不能制止尿液中已有细菌的繁殖。b. 氯仿：防腐效果较甲苯好。可能干扰尿沉渣镜检。c. 盐酸：分析测定甾体激素及其衍生物或儿茶酚胺以及含氮物质时常选用。100 mL 尿液中加 1 mL，或 24 小时尿液中 10~15 mL。d. 甲醛：100 mL 尿液中加 0.5 mL。用于 24h 尿无机离子定量及艾迪氏计数测定可干扰尿糖测定和干化学法的白细胞测定。7. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。适用于本科做粪便常规和其他检验项目所需粪便标本的采集。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、化验单编号、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集标本年月日时、申请医生及采样者签名。5.1 查对检验申请单、姓名，向受检者解释操作目的，以取得合作。5.2 发一次性尿杯一个给受检者，嘱受检者留取粪便标本一小时内送检。5.3 受检者按要求自己用一次性尿杯留取粪便标本交检验科工作人员编号待检。6.1 粪便常规检验留取 5 g 左右（指头大小），粪便标本应留取新鲜粪便的病理成份，如粘液、血液（红色或黑色部份）；若无病理成分，可各部位取材。不得被其他异物污染，不能从尿布上取粪便标本，不得从尿壶或便盆中取标本。6.2 潜血试验，应嘱患者收集标本前 3 天禁食动物性食物。服用铁剂、铋剂、动物血液及绿叶蔬菜等可影响隐血测定应注意避免。6.3 细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其它化学药品。6.4 阿米巴滋养体检测应注意标本保温并立即送检，立即检测。血吸虫毛蚴孵化需全量新鲜标本（不少于 30 g）。7. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及标本采集者签名。5.1 查对检验申请单、姓名，向受检者解释操作目的、注意事项，以取得合作。5.2 由临床医生采用前列腺按摩术，采集前列腺液于清洁玻片上（或容器内）立即送检。7. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生签名。5.1 查对检验申请单、姓名，向受检者解释操作目的、注意事项，以取得合作。5.2 发专用干净青霉素瓶一个给受检者，自己采用手淫方法取精液盛于干净小瓶中内，送交门诊检验室编号待检。6.2 不能用安全套取精液送检。一小时后取结果。（早上 11:00 前送检，下午 4:30 前送检）8. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。抽取脑脊液标本以做常规、生化、免疫、细菌学等项目检验。适用于本科做常规、生化、免疫、细菌学检验的脑脊液标本采集。3. 物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2% 利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、骨髓穿刺针、口罩、载玻片，试管及无菌管等。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。5.1.1 以髂后上棘连线与后正中线的交点为穿刺点，相当于第 3～4 腰椎棘突间隙，有时也可在上一或下一腰椎间隙进行。5.2.1 患者侧卧于硬板床，背部与床面垂直，两手抱膝紧贴腹部，头向前胸屈曲，使躯干呈弓形，脊柱尽量后凸以增宽脊椎间隙。5.2.2 常规消毒，戴无菌手套，覆盖无菌洞巾，用 2 利多卡因自皮肤到椎间韧带作局部麻醉。5.2.3 术者用左手固定穿刺皮肤，右手持穿刺针以垂直背部方向缓缓刺入，针尖稍斜向头部，成人进针深度约 4～6 厘米，儿童约 2～4 厘米。当针头穿过韧带与硬脑膜时，有阻力突然消失落空感，此时可将针芯慢慢抽出，即可见脑脊液流出。5.2.4 放液前先接上测压管测量压力，正常侧卧位脑脊液压力为 70～180 mm H2O 或 40～50 滴每分钟。可作 Queckenstedt 试验，了解蛛网膜下腔有无阻塞。即在测初压后，由助手先压迫一侧颈静脉约 10 秒，再压另一侧，最后同时压双侧颈静脉。正常压迫静脉后，脑脊液压力立即迅速升高一倍左右，解除压迫后 10～20 秒，迅速降至原来水平，称为梗阻试验阴性，示蛛网膜下腔通畅。若压迫颈静脉后，不能使脑脊液压力升高，则为梗阻试验阳性，示蛛网膜下腔完全阻塞。若施压后压力缓慢上升，放松后又缓慢下降，示有不完全阻塞。颅内压增高者，禁作此试验。5.2.5 撤去测压管，收集脑脊液 2~5 mL 送检；脑脊液应采集三管，第一管用于细菌培养检查（无菌操作），第二管用于常规检查，第三管用于生化检查。5.2.6 术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，胶布固定。5.2.7 去枕平卧 4～6 小时，以免引起术后低颅压头痛。6.1 严格掌握禁忌症，凡疑有颅内压升高者必须先作眼底检查，如有明显视神经乳头水肿或有脑疝先兆者，禁忌穿刺。凡患者处于休克、衰竭或濒危状态以及局部皮肤有炎症，颅后窝有占位性病变者均列为禁忌。6.2 穿刺时患者如出现呼吸、脉搏、面色异常时，应立即停止操作，并作出相应处理。6.3 鞘内给药时，应先放出等量脑脊液，然后再等量置换性药液注入。6.4 标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。6.5 收集标本后，必须立即送检。久置可致细胞破坏，葡萄糖分解，病原菌破坏或溶解。细胞计数标本应注意防止凝集。7.2 用于微生物检验的标本应注意保温，不可置冰箱保存。8. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。适用于本科做生化、免疫、微生物等项目所需的浆膜腔积液（胸水）采集。3. 物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2% 利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、胸腔穿刺针、一次性注射器、试管（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。在胸部叩诊实音最明显的部位，一般取肩胛线或腋后线第 7～8 肋间，有时也可取腋中线第 6～7 肋间或腋前线第 5 肋间。5.2.1 取坐位，两前臂置于椅背上，前额伏于前臂上；不能起床者可取半卧位，前臂上举抱于枕部。5.2.3 用 2% 利多卡因在下一肋骨上缘的穿刺点自皮肤至胸膜壁层进行局部浸润麻醉。5.2.4 术者以左手食指和中指固定穿刺部位皮肤，右手将穿刺针的三通活栓转到与胸腔关闭处，再将穿刺针在麻醉处缓缓刺入，当针锋抵挡感突然消失时，将三通活栓转至与胸腔相通，进行抽液。注射器抽满后，转动三通活栓使其与外界相通，排出液体。如用较粗的长穿刺针代替胸腔穿刺针时，先将针座后连续的橡皮管用血管钳夹住，然后进行穿刺，进入胸腔后再接上注射器，松开止血钳，抽吸液体，抽满后再次夹住橡皮管，取下注射器，将液体注入弯盘，计量及送检，作培养时应用无菌操作法留标本。5.2.5 抽液结束后拔出穿刺针，覆盖无菌纱布，稍用力压迫片刻，用胶布固定后嘱患者静卧。6.1 手术前向患者说明穿刺目的，消除顾虑，精神紧张者，可于术前半小时给地西泮 10 mg，或可待因 30 mg 以镇静止痛。6.2 术中密切观察患者反应，如有头晕、面色苍白、出汗、心悸、胸部压迫感等反应，或出现连续性咳嗽、气促等现象，应立即停止抽液，并皮下注射 0.1％肾上腺素 0.3～0.5 mL 或进行其他对症处理。6.3 一次抽液不应过多，诊断抽液 50～100 mL 即可；减压抽液，首次不超过 600 mL，以后每次不超过 1000 mL；如为脓胸，每次尽量抽尽。6.4 严格无菌操作，操作种防止空气进入胸腔，始终保持胸腔血压。6.5 标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。6.6 收集标本后，为防止细胞变性出现凝固或细菌破坏溶解等，必须立即送检。可于每 1000 mL 标本中加人 EDTA 100 mg 抗凝，以利于细胞涂片检测。7.2 微生物检验标本不应置于冰箱内，以免细菌死亡而使培养阴性。8. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。适用于本科做生化、免疫、微生物等项目所需的浆膜腔积液（腹水）采集。3. 物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2% 利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、胸腔穿刺针、一次性注射器、试管（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。5.1.1 左下腹脐与骼前上棘连线的中、外 1/3 交点。5.1.2 脐与耻骨联合连线中点上方 1.0 厘米，偏左或偏右 1.5 厘米处。5.1.3 侧卧位，在脐水平与腋中线之延长线相交处。此处常用于诊断性穿刺。5.1.4 少量积液，尤其有包裹性分隔时，须在 B 超指导下定位穿刺。5.2.2 取坐位靠背椅上，衰弱者可取半卧位、平卧位或侧卧位。5.2.3 常规消毒，戴无菌手套，覆盖消毒洞巾，自皮肤至壁层腹膜以 2％利多卡因作局部麻醉。5.2.4 术者左手固定穿刺皮肤，右手持穿刺针经麻醉处垂直刺入腹壁，待针尖抵挡感突然消失时，示针尖已穿过壁层腹膜，即可抽取腹水，计量并留样送检。诊断性穿刺，可直接用 20 mL 或 50 mL 注射器及适当针头进行；大量放液时，可用 8 号或 9 号针，并于针座接一橡皮管接容器。并留取标本送检，作培养时应用无菌操作法留标本。5.2.5 放液后拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，以手指压迫数分钟，再用胶布固定。大量放液后，需束以多头腹带，以防腹压骤降。内脏血管扩张引起血压下降或休克。6.1 术中严密观察患者，如有头晕、心悸、脉搏增快及面色苍白等，应立即停止操作，并作适当处理。6.2 放液不易过快、过多，肝硬化患者一次放液一般不超过 3000 mL，过多放液可诱发肝性脑病和电解质紊乱。6.3 放腹水时若流出不畅，可将穿刺针稍作移动或稍变换体位。6.4 术后嘱患者平卧、并使穿刺针孔位于上方以免腹水漏出。6.5 放液前、后均应测量腹围、脉搏、血压、检查腹部体征，以观病情变化。6.6 有肝性脑病先兆，结核性腹膜炎粘连包块、包虫病及卵巢囊肿者禁忌穿刺。6.7 标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。6.8 收集标本后，为防止细胞变性出现凝固或细菌破坏溶解等，必须立即送检。可于每 1000 mL 标本中加人 EDTA 100 mg 抗凝，以利于细胞涂片检测。7.2 微生物检验标本不应置于冰箱内，以免细菌死亡而使培养阴性。8. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。抽取骨髓标本以做骨髓细胞学检查和血细胞化学染色及细菌学检验。适用于本科做骨髓细胞学检查和血细胞化学染色及细菌学检验的骨髓标本采集。3. 物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2% 利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、骨髓穿刺针、口罩、载玻片。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。5.1.1 骼前上棘穿刺点，在骼前上棘后 1～2 厘米。5.1.2 髂前上棘穿刺点，位于骶椎两侧，臀部上方突出的部位。5.1.3 胸骨穿刺点，位于胸骨柄或胸骨体相当于第 1、2 肋间隙位置。5.2.1 常规消毒，戴无菌手套，覆盖无菌洞巾，用 2％利多卡因作局部皮肤，皮下及骨膜麻醉。5.2.2 将穿刺针固定器固定在适当的长度 (胸骨穿刺约 1.0 厘米处，髂骨穿刺约 1.5 厘米处)。用左手食指和中指固定在穿刺部位，以右手持针向骨面垂直刺入 (胸骨穿刺则应保持针体与骨面成 30°～40° 角)，当针尖接触骨质后则将穿刺针围绕针体长轴左右旋转，缓缓钻刺骨质，当感到阻力消失，且穿刺针已固定在骨内时，表示已进入骨髓腔。5.2.3 拔出针芯，放于无菌盘内，接上干燥的 10 mL 或 20 mL 注射器，用适当力量抽取，即有少量红色骨髓液进入注射器中，骨髓吸取量以 0.1～0.2 mL 为宜。作培养时应用无菌操作法留标本。5.2.4 将抽取的骨髓液滴于数张载玻片上，数张分别送验有核细胞计数，形态学及细胞化学染色检查。5.2.5 抽吸完毕，将针芯重新插入；左手取无菌纱布置于针孔处，右手将穿刺针连同针芯一起拔出，随即将纱布盖于针孔上，并按压 1～2 分钟，再用胶布固定纱布。6.1 术前应作出凝血检查，有出血倾向者操作进应特别注意，血友病者禁忌。6.3 穿刺针头进入骨质后，避免摆动过大，以免折断；胸骨穿刺不可用力过猛，以防穿透内侧骨板。抽取液量如作细胞形态学检查不易过多；如怀疑有败血症，则于涂片后，再接上注射器抽取骨髓液 1.0 mL 送骨髓培养。骨髓液抽取后应立即涂片，否则会很快凝固，使涂片失败。6.4 标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。7. 标本运输及实验前存放：低温条件 2~8 ℃ 运输。8. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、化验单编号、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集标本年月日时、申请医生及采样者签名。严格以无菌操作抽取血液（骨髓），于酒精灯火焰旁，精确而迅速地将标本注入血培养瓶内，并轻轻摇匀，以防凝固，血液量应相当于培液的十分之一，一般以 5 mL 为宜，骨髓量一般为 1～2 mL。为提高检出率，应在病人用药前或发热高峰时采取标本。一般采集中段尿，嘱患者用肥皂水及温开水洗外阴部及尿道口，用无菌纱布拭干，令其排尿，开始排出之尿弃去，而后采集中段尿于无菌培养管内送检。双侧肾盂尿，由专科医师采集，标记清楚左、右，以免混淆误诊。一般细菌培养，挑取粪便粘液、脓血部分，液态便应挑取絮状物。无法获取粪便时，可采取直肠拭子，将棉棒用生理盐水或甘油缓冲盐水湿润，之后插入肛门内 4~5 cm，轻轻转动一圈取出。标本留取后，应及时送检；防止尿液混入，以防降低检出阳性率。特殊培养应与实验室联系，按有关规定留取标本。5.4.1 采集痰液标本以清晨为好，嘱患者先用温开水漱口数次，以除去口腔内大部分杂菌，然后用力咳出气管深部的痰液一口，吐入无菌培养皿内，立即送检。5.4.2 支气管分泌物，应由医师利用支气管镜直接自患者支气管内采取后立即送检。5.5.1 采取标本时，应尽量揩去病灶表面的污染菌，以免影响检验结果。用无菌棉拭采取脓液及病灶分泌物于无菌培养管内送检，亦可用无菌手术采取组织碎片送检。5.5.2 脓样标本，最好用无菌注射器，抽取脓液，如行切开排脓亦可以用无菌棉拭采取标本送检。5.6 咽喉、鼻、耳、眼分泌物标本的采集。以无菌棉拭采取患者喉部或鼻、耳、眼部分分泌物，立即送检。采集标本时应尽量勿使棉拭接触唾液及口腔其他部位的粘膜，以防唾液的抑菌作用和杂菌污染。以无菌棉拭采取病灶分泌物于培养管内，立即送检。做有关性病病原体 PCR 检测时，取特定容器，按要求留取标本。6. 其它：如分析失败，分析原因并告知受检者重新采样检验。
2024-06-17
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